VK2/(μmol•L﹣1) | 0 | 10 | 20 | 30 | 40 |
细胞凋亡率/% | 3.15 | 6.37 | 14.70 | 19.31 | 26.42 |
下列叙述中,最合理的是( )
(1)为验证该酶对上述两种细胞的影响,某兴趣小组进行了以下实验.
实验材料:正常细胞、淋巴瘤细胞、L﹣天冬酰胺酶、培养基(含细胞生长所需物质)等
实验步骤:
实验组:培养基+L﹣天冬酰胺酶+淋巴瘤细胞
对照组:培养基+
两个组在相同且适宜条件下培养后,观察细胞生长状况,检测L﹣天冬酰胺含量.实验结果(如下):
实验分组 | 生长状况 | L﹣天冬酰胺含量 | |
培养基中 | 细胞内 | ||
实验组 | 抑制 | 缺乏 | 缺乏 |
对照组 | ? | 缺乏 | 正常 |
结果分析:
对照组细胞生长状况为 ,细胞内L﹣天冬酰胺含量正常的原因是 .两个组的细胞应保持大小相当、活力相同、 .
(2)患者多次静脉注射外源性L﹣天冬酰胺酶后疗效降低,经检测,在患者的血液发现了抗体与L﹣天冬酰胺酶结合物,说明患者产生了 免疫.
(3)L﹣天冬酰胺酶口服无疗效.兴趣小组依据上述研究结果设计了如下方案进行验证.
实验组:
步骤一:向2ml的L﹣天冬酰胺酶溶液加入2ml 溶液(甲液),将混合液(a液)pH调至1.5左右,37℃水浴保温10min;向a液加入4ml胰蛋白酶溶液(乙液),将混合液(b液)pH调至8左右,37℃水浴保温20min;
步骤二:向b液中加入含量为A的L﹣天冬酰胺,将混合液(c液)PH调至8左右,37℃水浴保温20min,检测c液中L﹣天冬酰胺的含量为B.
对照组:设置情况是 ;步骤二检测L﹣天冬酰胺的含量为C.
预期结果:若L﹣天冬酰胺的含量情况为 时,证明L﹣天冬酰胺酶口服无疗效.
实验材料:肝部长有肿瘤的小鼠,二氯二乙胺溶液,蒸馏水,生理盐水,含有全部营养物质的细胞培养液,显微镜,血球计数板,试管,吸管等.
①取洁净的培养皿一个,加入适量的培养液,从小鼠肝部切取肿瘤组织,剪碎,并用处理,使其分散开来,置于培养皿中培养.
②取洁净的试管5支,加入等量的培养液,编号1,2,3,4,5,并在1~4号试管中加入等量的不同浓度的二氯二乙胺溶液,5号试管中加入 .
③从培养皿中吸取等量的培养液置于1﹣5号试管中,振荡后,在冰箱中培养一段时间.
④从静置的5支试管中吸取适量的培养液置于血球计数板内,在显微镜下计数,记录数据.
①;
② .
实验组别 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
二氯二乙胺浓度(mg/mL) | 0.1 | 0.2 | 0.3 | 0.4 | 0 |
细胞数目(个/mL) | 320 | 275 | 186 | 96 | 560 |
根据实验结果,你能得出的结论是 .
苦马豆素(SW)是从灰苦马豆中分离出来而得名,被认为是“未来的肿瘤治疗药物”.以下是相关的实验研究过程及结果:
①将等量的小鼠肝癌Hepal﹣6细胞悬液,分别接种于若干支含等量培养液的培养瓶中.
②将培养瓶放于37℃、5%CO2培养箱中培养24h,静置、去除上清液;
③分别加入等量但含不同浓度SW的培养液,于37℃、5%CO2培养箱中继续培养;
④分别在24h、48h、72h时吸取培养液,观察结果,得到不同浓度SW对细胞存活率影响曲线(如图).
请回答:
①,对细胞生长(存活)的抑制作用越强;
②,对细胞生长(存活)的抑制作用越强.
表:培养48h细胞数目及凋亡蛋白Bax和Bcl﹣2的表达量
SW | 癌细胞数目 | 凋亡细胞数目 | Bax蛋白 | Bcl﹣2蛋白 |
2微克/mL | + | ++++ | ++++ | + |
1微克/mL | ++ | +++ | +++ | ++ |
0.5微克/mL | +++ | ++ | ++ | +++ |
0微克/mL | ++++ | + | + | ++++ |
注:“+”的数量表示相对值的多少
据此推测,SW可能是通过诱发癌细胞来抑制肿瘤生长的,其原因可能是SW促进了癌细胞内基因的表达.
①方法步骤:
a.取4只相同的培养瓶,编号,分别加入等量的完全培养液并接种等量的离体胃癌细胞。
b.1号培养瓶为空白对照,向2~4号培养瓶中分别加入μg/mL蜂毒素溶液。
c.培养48 h后,检测并统计,结果如图甲所示。
d.重复a、b步骤,检测凋亡基因(Bax、Bel-2)的表达,结果如图乙所示。
②分析讨论:
a.图甲表明。
b.图甲、图乙表明:从基因水平上看,蜂毒素诱导胃癌细胞凋亡与有关。当Bel2蛋白/Bax蛋白的比值出现趋势时,将会诱导胃癌细胞凋亡。